Анализатор мочи

Подготовка к суточному анализу мочи

Для сбора суточного количества мочи нужно придерживаться следующих правил:

Накануне исключить из рациона свеклу (так как может измениться окраска мочи), употребление алкоголя, сладкую, копченую, соленую и острую пищу;
Во время того, как человек собирает мочу, нужно питаться в обычном режиме и принимать обычное количество воды, при этом подсчитывать объем принятой жидкости (вместе с жидкой пищей), так как это крайне важно для конечных результатов анализа;
Начинать собирать мочу нужно утром, обычно это делают с 6 до 7 утра, после опорожнения мочевого пузыря;
Первая порция мочи для исследования не годится, так как считается ночной. Врача интересует только материал, который будет собран в течение суток, так как во время бодрствования активно фильтруются вредные вещества и продуцируют мочу;
Обязателен предварительный туалет половых органов (в мочу не должны попасть патогенный бактерии, микробы и клетки эпителия), также не рекомендуется проводить сбор мочи для женщин во время менструаций, так как можно получить недостоверные результаты анализа);
Для сбора мочи нужно подготовить чистую емкость, для этого подойдет приобретенный в аптеке специальный контейнер, в крайней случае можно использовать обычную 3-литровую банку, которая должна предварительно быть вымыта.. В отдельных случаях (например, для определения гноя или крови в моче) забор мочи проводят с помощью катетера.

В отдельных случаях (например, для определения гноя или крови в моче) забор мочи проводят с помощью катетера.

Показания

В°Ã¶Ã½Ã¾ ÿþýøüðÃÂÃÂ, ÃÂÃÂþ ðýðûø÷ üþÃÂø ýð ðÃÂøÿøÃÂýÃÂõ úûõÃÂúø ýð÷ýðÃÂðÃÂàýõ ÃÂþûÃÂúþ ò ÃÂõûÃÂàòÃÂÃÂòûõýøàøûø ÿþôÃÂòõÃÂöôõýøàþÃÂÃÂÃÂÃÂÃÂÃÂòøàÿÃÂþóÃÂõÃÂÃÂøÃÂþòðýøàþýúþûþóøÃÂõÃÂúþóþ ÿÃÂþÃÂõÃÂÃÂð, ýþ ÃÂðúöõ ò úðÃÂõÃÂÃÂòõ ÿÃÂþÃÂøûðúÃÂøÃÂõÃÂúþóþ üõÃÂþÿÃÂøÃÂÃÂøÃÂ, ú ÿÃÂøüõÃÂÃÂ, úþóôð ÃÂõûþòõú ÿÃÂþÃÂþôøàõöõóþôýþõ üõôøÃÂøýÃÂúþõ þñÃÂûõôþòðýøõ.

çðÃÂõ òÃÂõóþ þÃÂýþòýÃÂüø ÿþúð÷ðýøÃÂüø ú ÿÃÂþòõôõýøàôðýýþóþ ûðñþÃÂðÃÂþÃÂýþóþ øÃÂÃÂûõôþòðýøàÃÂòûÃÂÃÂÃÂÃÂàÃÂûõôÃÂÃÂÃÂøõ ÃÂþÃÂÃÂþÃÂýøÃÂ:

• ÿþôþ÷ÃÂõýøõ ýð ÃÂð÷òøÃÂøõ þýúþûþóøÃÂõÃÂúþóþ ÷ðñþûõòðýøÃÂ;
• òþ÷üþöýþõ ÿþÃÂðöõýøõ þÃÂóðýþò üþÃÂõòÃÂòþôÃÂÃÂõù ÃÂøÃÂÃÂõüàþÿÃÂÃÂþûõòÃÂüø þñÃÂð÷þòðýøÃÂüø;
• ýõþñÃÂþôøüþÃÂÃÂàþÿÃÂõôõûøÃÂàüõÃÂÃÂþÃÂðÃÂÿþûþöõýøõ þÿÃÂÃÂþûø;
• úþýÃÂÃÂþûàñþûÃÂýþóþ, àúþÃÂþÃÂþóþ ÃÂöõ ÿþÃÂÃÂðòûõý ôøðóýþ÷ ÃÂðúð üþÃÂõòÃÂòþôÃÂÃÂøàÿÃÂÃÂõù;
• ýõþñÃÂþôøüþÃÂÃÂàòÃÂÃÂòøÃÂàò ÃÂþÃÂÃÂðòõ üþÃÂø úûõÃÂþÃÂýÃÂõ ÃÂÃÂÃÂÃÂúÃÂÃÂÃÂàúÃÂþòÃÂýþù öøôúþÃÂÃÂø;
• þÿÃÂþòõÃÂöõýøõ øûø ÿþôÃÂòõÃÂöôõýøõ ÿõÃÂòøÃÂýþ ÿþÃÂÃÂðòûõýýþù ÿðÃÂþûþóøø;
• þÃÂõýúð ÃÂÃÂÃÂõúÃÂøòýþÃÂÃÂø ÃÂõ÷ÃÂûÃÂÃÂðÃÂþò þàýð÷ýðÃÂõýýÃÂàÃÂõÃÂðÿõòÃÂøÃÂõÃÂúøàüõÃÂþÿÃÂøÃÂÃÂøù;
• þÃÂüþÃÂàÿþÃÂûõ ÿÃÂþòõôõýýþóþ ÃÂøÃÂÃÂÃÂóøÃÂõÃÂúþóþ òüõÃÂðÃÂõûÃÂÃÂÃÂòð.

ÃÂÃÂþüõ ÃÂþóþ, òðöýþ ÿþýøüðÃÂÃÂ, ÃÂÃÂþ ÿÃÂþòõôõýøõ ÃÂøÃÂþûþóøÃÂõÃÂúþóþ øÃÂÃÂûõôþòðýøàÃÂÃÂøýàñõ÷ òøôøüÃÂàýð ÃÂþ þÃÂýþòðýøù ÃÂòûÃÂõÃÂÃÂàýõÃÂõûõÃÂþþñÃÂð÷ýÃÂü. ÃÂüõýýþ ÿþ ÃÂÃÂþù ÿÃÂøÃÂøýõ ñþûÃÂÃÂÃÂàÃÂðÃÂÃÂàýõþñÃÂþôøüþù øýÃÂþÃÂüðÃÂøø ÃÂÿõÃÂøðûøÃÂÃÂàÿþûÃÂÃÂðÃÂàò ÃÂþôõ þñÃÂõúûøýøÃÂõÃÂúþóþ ðýðûø÷ð.

ÃÂýðûø÷ ýð ÃÂøÃÂþûþóøàÿÃÂøüõýÃÂõÃÂÃÂàÃÂþûÃÂúþ ò ÃÂõàÃÂøÃÂÃÂðÃÂøÃÂÃÂ, úþóôð õÃÂÃÂàÿþôþ÷ÃÂõýøõ ýð ÃÂð÷òøÃÂøõ þýúþûþóøÃÂõÃÂúþóþ ÿÃÂþÃÂõÃÂÃÂð.

История

Первое устройство для проточной цитометрии на основе импеданса , использующее принцип Коултера , было раскрыто в патенте США 2656508, выданном в 1953 году Уоллесу Х. Коултеру . Мак Фулвайлер был изобретателем предшественников современных проточных цитометров, в частности, сортировщика клеток. Фулвайлер разработал это в 1965 году в своей публикации в Science . Первое устройство проточной цитометрии на основе флуоресценции (ICP 11) было разработано в 1968 году Вольфгангом Гёде из Университета Мюнстера , подано на патент 18 декабря 1968 года и впервые введено в продажу в 1968/69 году немецким разработчиком и производителем Partec через Phywe AG в Геттингене. . В то время другие ученые все еще отдавали предпочтение абсорбционным методам перед флуоресцентными методами. Вскоре после этого были разработаны инструменты проточной цитометрии, в том числе Cytofluorograph (1971) от Bio / Physics Systems Inc. (позже: Ortho Diagnostics), PAS 8000 (1973) от Partec, первый инструмент FACS (флюоресцентная сортировка клеток) от компании Бектон Дикинсон (1974), ICP 22 (1975) от Partec / Phywe и Эпики от Коултера (1977/78). Первый проточный высокочастотный импедансный цитометр без этикеток, основанный на запатентованной микрожидкостной «лаборатории на чипе», Ampha Z30, был представлен Amphasys (2012).

Название технологии

Первоначальное название технологии проточной цитометрии на основе флуоресценции было «импульсная цитофотометрия» ( немецкий язык : Impulszytophotometrie ), основанное на первой заявке на патент на проточную цитометрию на основе флуоресценции. На 5-й конференции Американского инженерного фонда по автоматизированной цитологии в Пенсаколе (Флорида) в 1976 году — через восемь лет после появления первого проточного цитометра на основе флуоресценции (1968) — было решено использовать название «проточная цитометрия», термин это быстро стало популярным.

Приложения

Технология находит применение в ряде областей, включая молекулярную биологию , патологию , иммунологию , вирусологию, биологию растений и морскую биологию . Он имеет широкое применение в медицине, особенно в трансплантации, гематологии, иммунологии опухолей и химиотерапии, пренатальной диагностике, генетике и сортировке сперматозоидов для предварительного выбора пола . Проточная цитометрия широко применяется для обнаружения аномалий сперматозоидов, связанных с фрагментацией ДНК, в анализах мужской фертильности . Кроме того, он широко используется в исследованиях для обнаружения повреждений ДНК , расщепления каспаз и апоптоза . Фотоакустическая проточная цитометрия используется при изучении бактерий с множественной лекарственной устойчивостью (чаще всего MRSA) для обнаружения, дифференциации и количественного определения бактерий в крови, отмеченных окрашенными бактериофагами. В неврологии также может быть проанализирована совместная экспрессия поверхностных и внутриклеточных антигенов. В морской биологии автофлуоресцентные свойства фотосинтетического планктона могут быть использованы с помощью проточной цитометрии для характеристики численности и структуры сообщества. В микробиологии его можно использовать для скрининга и сортировки мутантных библиотек транспозонов, созданных с использованием транспозонов, кодирующих GFP (TnMHA), или для оценки жизнеспособности. В белковой инженерии проточная цитометрия используется в сочетании с дрожжевым дисплеем и бактериальным дисплеем для идентификации вариантов белка с желаемыми свойствами, отображаемых на клеточной поверхности. Основное преимущество проточной цитометрии перед гистологией и ИГХ — это возможность точно измерить количество антигенов и возможность окрашивать каждую клетку множеством антител-флуорофоров. В современных лабораториях с каждой клеткой может быть связано около 10 антител. Это намного меньше, чем массовый цитометр, где в настоящее время можно измерить до 40, но по более высокой цене и медленнее.

Протоколы проточной цитометрии, используемые для исследований, часто нуждаются в валидации из-за риска связывания антител с рецепторами Fc.

Анализ CFSE

Клеточная пролиферация — основная функция иммунной системы. Часто требуется проанализировать пролиферативную природу клеток, чтобы сделать какие-то выводы. Одним из таких тестов для определения пролиферации клеток является отслеживающий краситель карбоксифлуоресцеиндиацетат сукцинимидиловый эфир (CFSE). Это помогает контролировать пролиферативные клетки. Этот анализ дает количественные, а также качественные данные во время экспериментов с временными рядами. Этот краситель ковалентно связывается с долгоживущими молекулами, находящимися внутри клетки. Когда клетки делятся, делятся и молекулы, и дочерние клетки обладают половиной красителя, чем родительская популяция. Это снижение интенсивности можно визуализировать с помощью проточной цитометрии. В литературе этот мощный метод проточной цитометрии и CFSE использовался для определения эффективности Т-клеток в уничтожении клеток-мишеней при раке, таком как лейкемия. Чтобы визуализировать гибель клеток-мишеней, как быструю, так и медленную, ученые использовали маркировку CFSE с окрашиванием антителами определенных типов клеток и флуоресцентно меченных микрогранул. Это также дало информацию о пролиферации клеток-мишеней при обработке определенных цитокинов.

Показания к исследованию

Обычно его назначают при наличии соответствующих показаний:

1. Когда происходят нарушения общего самочувствия.
2. При изучении наличия заболеваний мочеполовой системы (например, в случае цистита, простатита или уретрита).
3. Если в организме развивается патологический процесс, исследование биоматериала поможет получить информацию о том, как происходит его развитие.
4. В тех случаях, когда проводится курс лечебной терапии, такое исследование позволяет проконтролировать состояние организма больного.
5. При прохождении профилактического осмотра, таким образом можно получить важную информацию о состоянии организма.

Исследование аналитических характеристик измерения концентрации белка в моче

1. Определение оптимальной длины волны светодиодов

     Для выяснения наиболее оптимальной длины волны излучения светодиодов для тестовой зоны «Белок» были сняты спектры отражения тест-полосок во всем видимом диапазоне длин волн для разных концентраций аналита (рис. 3). Изменения коэффициента отражения аналитической зоны «Белок» обусловлены протекающей в этой зоне реакцией образования комплекса «белок — бромфеноловый синий». Из приведенных спектров видно, что при разных концентрациях белка в моче наиболее значительные изменения коэффициента отражения наблюдаются в диапазоне 600–630 нм. Поэтому в анализаторе URiСКАН-strip для аналитической зоны «Белок» применяются светодиоды с длиной волны из указанного спектрального диапазона, а именно 605 нм. В то же время при определении белка в моче с использованием методов «сухой химии» следует учитывать тот факт, что бромфеноловый синий высоко чувствителен к альбуминовой фракции и намного менее чувствителен к другим фракциям белка, что существенно ограничивает применение тест-полосок для диагностики протеинурии, обусловленной глобулиновыми фракциями, мукопротеинами, низкомолекулярными белками, а также протеинурии Бенс-Джонса .

2. Зависимость коэффициента отражения аналитической зоны «Белок» от концентрации белка

     Для этого были приготовлены аттестованные по альбумину образцы мочи с разными концентрациями и на анализаторе мочи URiСКАН-strip выполнены серии измерений для каждого значения концентрации. Как видно из рис. 4, полученная калибровочная кривая имеет нелинейный характер, что вполне характерно для отражательной фотометрии. Калибровочная зависимость Котр записывается в память приборов URiСКАН-strip и используется для расчета результата измерения концентрации белка в исследуемых образцах мочи. На следующем этапе была оценена результирующая погрешность определения белка в моче с использованием анализатора URiСКАН-strip. На результирующую погрешность измерения влияют вариации фотометра и измерения.

3. Воспроизводимость измерений коэффициента отражения

     Для исследований вариаций измерения коэффициента отражения фотометра были изготовлены специальные стандартные цветные тест-полоски, имитирующие по своим спектральным характеристикам реальные мочевые тест-полоски Uriscan 11 strip. Применение для исследования стандартных тест-полосок позволяет исключить химические вариации, связанные с качеством и количеством реагентов тестовой зоны полоски, объемом мочи, нанесенным на тестовую зону, интерферентами, содержащимися в образцах мочи, концентрацией аналита, временем инкубации, и оценить исключительно фотометрические вариации. Вариации коэффициентов отражения для 20 измерений в канале «Белок» представлены в табл. 2. Столь малые вариации измерения коэффициентов отражения на анализаторе URiСКАН-strip обусловлены вышеописанным алгоритмом измерения и специально разработанной конструкцией фотометра, которые позволили устранить вариации всей измерительной системы прибора: δF и δI0 .

4. Воспроизводимость в серии и правильность результатов измерений

5. Межлотовые вариации концентрации белка для тестполосок Uriscan 11 strip

6. Межприборная воспроизводимость результатов измерений

     Поскольку калибровка прибора вводится в память каждого прибора при его производстве и не предполагает выполнения процедуры калибровки в лабораториях, важной характеристикой таких приборов является межприборная воспроизводимость. Для исследования этой характеристики были взяты 40 приборов, и на каждом из них было выполнено по одному измерению

Результаты представлены в табл. 5. Сравнивая показатели точности в табл. 3, 4 и 5, можно сделать вывод: межприборная вариация меньше по сравнению с вариацией в аналитической серии и сопоставима с межлотовой вариацией. Полученные результаты свидетельствуют о том, что при выполнении анализа мочи в разных лабораториях, оборудованных анализаторами URiСКАН-strip, будут получены сопоставимые результаты и пациенту при мониторинге патологического процесса в динамике не обязательно выполнять исследования мочи в одной и той же лаборатории. Итак, получив данные межлотовой и межприборной вариации, можно оценить суммарную погрешность определения белка в моче в диапазоне 0,1–10,0 г/л при самых крайних условиях:

Почему важно делать проточной цитометрии?

Типичный аппарат для проведения проточной цитометрии позволяет определять до 5-10 различных параметров клетки, таких как размер, содержание белков, ДНК, липидов, антигенные свойства, активность ферментов и т.п. Кроме того, исследование отдельно взятых клеток даёт возможность выявить и оценить степень гетерогенности популяции, что не всегда может быть достигнуто другими методами.

В настоящее время проточная цитометрия применяется для выявления определённых клеток в исследуемых образцах (как бактериальных и грибковых, так и собственных клеток организма человека), определения чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам, а также мониторирования состояния вирусного процесса у ВИЧ-инфицированных пациентов.

Выявление бактериальных, грибковых, а также собственных клеток организма в биологических жидкостях крайне важно для диагностики многих заболеваний. В ходе одного из исследований было показано, что проточная цитометрия обладает в 100-1000 раз более высокой чувствительностью по сравнению с микроскопией и позволяет выявлять бактериальные клетки в количестве 10-100 в 1 мл крови

При более низкой концентрации бактерий в образце возможно проведение предварительной инкубации. Высокую чувствительность методу придает использование моноклональных антител, помеченных флуоресцирующим веществом (наиболее часто изотиоцианат).

Проточная цитометрия позволяет не только выявлять инфицирование микроорганизмами, но и определять спектр их чувствительности, причём, длительность исследования не превышает нескольких часов. Подвергнутые воздействию антибиотиков (in vivo или in vitro) микроорганизмы сравнивают с контрольными образцами того же штамма для установления их жизнеспособности, а также изменений в нуклеиновых кислотах, белках, оболочке клеток и т.п., что позволяет оценить как степень эффекта антибиотика, так и точку приложения его действия.

Ещё одной областью применения проточной цитометрии является мониторирование состояния вирусного процесса у ВИЧ-инфицированных лиц путём определения абсолютного количества CD4+ клеток и их доли в популяции лимфоцитов. Методика может также использоваться для контроля эффективности проводимой терапии.

Таким образом, проточная цитометрия обладает рядом преимуществ по сравнению с традиционными методами микробиологических исследований. Появление в последние годы в свободной продаже специальных наборов для выявления целого ряда микроорганизмов позволило значительно расширить диагностические возможности проточной цитометрии. Тем не менее, вопрос стандартизации метода и адекватной интерпретации его результатов остаётся актуальным до сих пор.

Почему важно делать проточной цитометрии?

Типичный аппарат для проведения проточной цитометрии позволяет определять до 5-10 различных параметров клетки, таких как размер, содержание белков, ДНК, липидов, антигенные свойства, активность ферментов и т.п. Кроме того, исследование отдельно взятых клеток даёт возможность выявить и оценить степень гетерогенности популяции, что не всегда может быть достигнуто другими методами.

В настоящее время проточная цитометрия применяется для выявления определённых клеток в исследуемых образцах (как бактериальных и грибковых, так и собственных клеток организма человека), определения чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам, а также мониторирования состояния вирусного процесса у ВИЧ-инфицированных пациентов.

Выявление бактериальных, грибковых, а также собственных клеток организма в биологических жидкостях крайне важно для диагностики многих заболеваний. В ходе одного из исследований было показано, что проточная цитометрия обладает в 100-1000 раз более высокой чувствительностью по сравнению с микроскопией и позволяет выявлять бактериальные клетки в количестве 10-100 в 1 мл крови

При более низкой концентрации бактерий в образце возможно проведение предварительной инкубации. Высокую чувствительность методу придает использование моноклональных антител, помеченных флуоресцирующим веществом (наиболее часто изотиоцианат).

Проточная цитометрия позволяет не только выявлять инфицирование микроорганизмами, но и определять спектр их чувствительности, причём, длительность исследования не превышает нескольких часов. Подвергнутые воздействию антибиотиков (in vivo или in vitro) микроорганизмы сравнивают с контрольными образцами того же штамма для установления их жизнеспособности, а также изменений в нуклеиновых кислотах, белках, оболочке клеток и т.п., что позволяет оценить как степень эффекта антибиотика, так и точку приложения его действия.

Ещё одной областью применения проточной цитометрии является мониторирование состояния вирусного процесса у ВИЧ-инфицированных лиц путём определения абсолютного количества CD4+ клеток и их доли в популяции лимфоцитов. Методика может также использоваться для контроля эффективности проводимой терапии.

Таким образом, проточная цитометрия обладает рядом преимуществ по сравнению с традиционными методами микробиологических исследований. Появление в последние годы в свободной продаже специальных наборов для выявления целого ряда микроорганизмов позволило значительно расширить диагностические возможности проточной цитометрии. Тем не менее, вопрос стандартизации метода и адекватной интерпретации его результатов остаётся актуальным до сих пор.

Что такое Проточная цитометрия?

Проточная цитометрия (ПЦ) представляет собой технику для быстрого оптического анализа отдельно взятых клеток. Методика заключается в выявлении рассеяния света лазерного луча при прохождении через него клетки в струе жидкости, причём, степень световой дисперсии позволяет получить представление о размерах и структуре клетки. Кроме того, в ходе анализа учитывается уровень флуоресценции химических соединений, входящих в состав клеточной стенки (аутофлуоресценция) или внесённых в образец перед проведением проточной цитометрии.

Методика обладает целым рядом преимуществ перед традиционной цитометрией, в числе которых:

• возможность исследования в ходе одного анализа значительно большего числа клеток (более 100000, тогда как микроскопия позволяет исследовать только несколько сотен клеток), что позволяет получать статистически достоверные результаты и выявлять редкие типы клеток;
• возможность проведения количественных измерений путем дифференцировки интенсивности рассеяния/флуоресценции при различных длинах волн;
• возможность одновременного исследования различных характеристик и структурных компонентов одной клетки.

Нормы при исследовании осадка

Обнаруженные осажденные структуры можно поделить на органические или организованные (эритроциты, лейкоциты, цилиндры, эпителий) и неорганические (соли в кислом или щелочном осадке, а также кристаллизовавшаяся «органика», бактерии, слизь, грибы). Нормальные показатели осадка можно свести в такую таблицу:

Также в зависимости от кислотности в урине могут встречаться кристаллы мочевины, креатинина или углекислой извести, однако  диагностическое значение они имеют лишь в ряде особых случаев.

Подготовка к взятию мочи

К забору любого биологического материала нужно правильно подготовиться. Это делает исследование максимально информативным.

Для большинства методик анализа мочи достаточно придерживаться нескольких простых рекомендаций:

• За 2-3 суток не следует употреблять продукты, которые меняют цвет урины (свекла, вишня, морковь);
• Перед забором жидкости нужно провести гигиенические процедуры. Интимную зону лучше очищать под теплой водой без моющих средств;
• За 2-3 суток необходимо отказаться от употребления алкоголя;
• Около 2-3 дней до анализа желательно сократить физические нагрузки;
• За 10-12 дней нужно прекратить прием антибиотиков и других специфических препаратов. Нельзя делать это без предварительной консультации специалиста. Если остановить лечение нельзя, обязательно предупредите лечащего врача.

Перед забором мочи на катехоламины врач дает индивидуальные рекомендации. Нужно исключить прием сильнодействующих препаратов (например, гормонов), избегать эмоциональных перегрузок. Накануне сбора урины на оксалаты нужно прекратить принимать витамины.

Другие методы исследования мочи

Дополнительно для уточнения диагноза могут назначаться другие пробы урины.

Метод Амбурже

Биоматериал для такого исследования должна браться при условии, что пациент пил мало жидкости днём и совсем не пил ночью. После первого мочеиспускания больной собирает урину через каждые три часа.

Проба предпринимается для определения наличия различных форменных элементов в урине.

Метод по Каковскому-Аддису

Метод по Каковскому-Аддису в последние годы не очень распространён. Его применяют для исследования наличия и количества форменных элементов в моче больного.

Пациент перед сбором урины питается согласно белковой диете и ограничивает употребление жидкости.

Первое утреннее мочеиспускание пропускается. Далее в течение суток собирается урина. При этом в неё добавляются 4-5 капель Формалина. Материал необходимо сохранять в холодильной камере.

Этот способ анализа считается очень трудоёмким и применяется редко.

Проба Сулковича

С помощью этой пробы определяется содержание в моче кальция. Известно, что данный микроэлемент является жизненно важным для организма. Недостаточное его содержание может указывать на нарушение здоровья.

Для исследования используется утренняя порция мочи. Её смешивают с особым веществом. В результате происходит химическая реакция. Одним из её результатов является помутнение жидкости. По его характеристикам делается вывод:

1. Помутнение отсутствует. Это говорит о недостатке витамина D и о нарушении функции околощитовидных желез.
2. Незначительная степень свидетельствует о том, что у пациента нормальная реакция здорового человека.
3. Слишком высокая степень помутнения свидетельствует о чрезмерном содержании витамина D и слишком высокой активности околощитовидных желез.

Проба Рерберга

В этом случае происходит параллельное исследование состава мочи и венозной крови пациента. Это необходимо для определения уровня концентрации креатинина. Такой вид анализа обычно используется в тех случаях, когда речь идёт о:

• гломерулосклерозе;
• нефритах;
• почечной недостаточности;
• синдроме “сморщенной почки”.

Врач таким образом изучает реабсорбционную и выделительную функции почек. Первая из них характеризует обратное всасывание определённых веществ в кровь или лимфу.

Как подготовиться к анализу

Чтобы снизить риск неправильной расшифровки результатов, нужно знать, как правильно собрать суточную мочу на анализ. О том, каких правил нужно придерживаться во время сбора биоматериала, пациенту должен рассказать врач, назначивший тестирование. За 3 суток до сбора биоматериала необходимо соблюдать следующие рекомендации.

Необходимо исключить из рациона продукты, которые могут окрасить урину. В первую очередь это касается свеклы, моркови и ягод. Ограничить потребление жирной и жареной пищи. Также стоит воздержаться от чрезмерного потребления соли и сахара, на протяжении дня необходимо выпивать не менее 2 л фильтрованной воды.

Следует отказаться от употребления лекарственных средств. Если обойтись без приема медикаментов не удастся, об этом необходимо оповестить врача, который будет проводить расшифровку суточного диуреза. Поскольку для такого биохимического анализа сбор мочи придется осуществлять на протяжении всего дня, пациенту рекомендуется взять выходной и отказаться от поездок.

Чтобы правильно сдать мочу, нужно придерживаться таких правил. Для начала необходимо подготовить стерильную емкость, в которой будет храниться собранный материал. Ее объем должен быть не менее 2 литров. Желательно, чтобы емкость плотно закрывалась. Оптимальный вариант – приобрести специальный стерильный контейнер из пластика, который продается в каждой аптеке.

Пациенту необходимо зафиксировать время начала сбора биоматериала, чтобы прошли именно сутки. Если первый забор биоматериала будет осуществляться в 8 утра, то и последняя порция урины должна быть взята не позднее этого времени.

Перед процедурой необходимо провести гигиену половых органов без использования мыла и гелей с ароматизаторами. Единственное, что можно использовать, – слабый раствор марганцовки или фурацилина.

Первая порция урины после пробуждения не собирается, но фиксируется время опорожнения мочевого пузыря. Емкость с мочой рекомендуется хранить в холодильнике на средней полке, что поможет избежать замораживания. Крышка должна быть плотно закрыта.

В день сдачи образца содержимое контейнера нужно тщательно перемешать и перелить 150–200 мл. образца в стерильную емкость. Этих правил необходимо придерживаться всем пациентам вне зависимости от возраста, пола и состояния здоровья. Также их нужно соблюдать и во время беременности.

Сколько делается анализ, и когда будут готовы результаты, зависит от типа лаборатории. В большинстве случаев расшифровка анализа готовится не более 2 суток, после чего бланк с результатами выдается пациенту на руки